Descripción
| Sumario: | CAPÍTULO I. 1.1 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA 1.2. JUSTIFICACIÓN. 1.3. OBJETIVOS GENERALES Y ESPECÍFICOS. 1.3.1. Objetivo general: Determinación de la frecuencia de bacterias resistentes en muestras clínicas detectadas mediante la prueba Xpert® Carbar-R; en el Complejo Hospitalario Dr. Arnulfo Arias Madrid de junio a octubre del 2015. 1.3.2. Objetivos específicos. -- CAPITULO II . II.1 MARCO TEÓRICO II.2. Características generales de las bacterias. II.2.1. Bacterias. II.2.2. Morfología bacteriana. II.3. Antibióticos. II.3.1. Clasificación y mecanismo de acción de los antibióticos. II.3.1.1. Sustancias que inhiben la síntesis de las paredes celulares bacterianas. 11.3.1.2 Sustancias que actúan directamente en la membrana celular del microorganismo, aumentando la permeabilidad y provocando la salida de compuestos intracelulares. 11.3.1.3 Sustancias que alteran la función de las subunidades ribosómicas 30S o 50S para inhibir en forma reversible la síntesis de proteínas. 11.3.1.4 Sustancias que se adhieren a la subunidad ribosómica 30S y alteran la síntesis de proteínas: que suelen ser bactericidas. 11.3.1.5 Sustancias que modifican eI metabolismo del ácido nucleíco bacteriano, y que Inhiben a la polimerasa de RNA y las quinolonas, que inhiben las topoisomerasa. 11.3.1.6 Los antimetabolitos, que bloquean a ciertas enzimas esenciales del metabolismo o del folato. 11.4 Resistencia antimicrobiana . 11.4.1 Pérdida de porinas. 11.4.2 Presencia de Beta-Lactamasas. 11.4.3 Bombas de salida de antibióticos. 11.4.4 Enzimas que modifican químicamente aI enzima y lo inactivan. 11.4.5 Mutaciones en la diana específica del antibiótico. 11.4.6 Mutaciones en los ribosomas. 11.4.7 Mutaciones en la estructura del Liposacárido (LPS). 11.4.8. Desvíos alternativos. 11.5. Métodos de detección de resistencias. 11.5.1. Método de microdilución en caldo. 11.5.2. Método de difusión en disco. 11.5.3. Método de agar dilución. 11..5.4. Método E-test. 11.5.5. Métodos comerciales. 11.5.6. Métodos moleculares. 11.5.7. Sistemas de PCR múltiples automatizados y cerrados. -- CAPÍTULO III. DISENO METODOLÓGICO. 111.1 Área de estudio. 111.2. Tipo de estudio. 111.3. Universo y muestra. 111.3.1. Universo. 111.3.2. Muestra. 111.4. Criterios de inclusión. 111.5. Criterios de exclusión. 111.6. Tipos de muestreo. 111.7. Plan de procesamiento y recolección de datos. – III.8. MATERIALES Y METODOLOGIA. 111.8.1. Materiales. 111.9. Metodología. 111.9.1. Descripción y preparación de los medios utilizados. 111.9.1.1. CHROMagar KPC. 111.10. Vitek 2®. 111.11 PCR. 111.11.1. PCR en tiempo real. 111.11.1.1. Componentes de una PCR en tiempo real. 111.12. Sistema GeneXpert® (Cepheid). 111.12.1. Xpert® Carba-R (Cepheid). -- CAPÍTULO IV . RESULTADOS Y DISCUSIÓN. -- CAPÍTULO IV iError! Marcador no definido. IV.1 Resultados. Discusión. CONCLUSIÓN. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS.
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| Notas: | Trabajo de graduación para optar al grado académico de Licenciatura en Tecnología Médica. – Página del título. |
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| Descripción Física: | 107 páginas : tablas, gráficas, ilustraciones en color ; 28 cm. |
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| Bibliografía: | Incluye referencias bibliográficas y anexos. |
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